（1）選擇合適的超濾管。通常應截留分子量不應大于目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管。若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。認真閱讀使用說(shuō)明書(shū)，注意超濾膜對各種化學(xué)物質(zhì)的耐受程度有所不同。

（2）新買(mǎi)來(lái)的超濾是干燥的，使用前加入超純水，水量*過(guò)膜，冰浴或冰箱里預冷幾分鐘。然后將水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超過(guò)管頂的白線(xiàn)為準。操作要輕，加入蛋白液前，超濾管需要插在冰上預冷。

（3）平衡。質(zhì)量和重心二者都要達到平衡。注意轉速和加速度不可太快，否則直接損壞超濾膜。開(kāi)始離心超濾（離心機預冷至4度）。不同離心機的轉速 rpm換算成g之后，有所不同。離心機的加速度調至低檔，減小對膜的壓力。注意，一定要等離心機達到目的轉速之后，方可離開(kāi)離心機，否則離心機出問(wèn)題時(shí)，無(wú)法第一時(shí)間處理。膜與轉軸的方向根據說(shuō)明書(shū)調整（角轉離心機的情況是膜與軸垂直）。在實(shí)際使用中，一般轉速開(kāi)的比說(shuō)明書(shū)里的要低，這樣可以延長(cháng)離心管的使用壽命。

（4）當濃縮到剩下1ml時(shí)，取50ul緩沖溶液，加入10ul流穿，看有沒(méi)變藍色，以此判斷超濾管是否漏掉蛋白。如果管漏了，將上層和流穿重新倒入新管中開(kāi)始超濾。要精確判斷是否漏管，用5mgml的BSA離心10min，再取流穿，跑蛋白膠或Bradford粗測，繼續加入剩下的蛋白液濃縮（在冰上操作，防止蛋白受熱），直到所有濃縮液都加完為止。離心過(guò)程中注意是否發(fā)生蛋白沉淀，導致堵管。若發(fā)生沉淀，要確定沉淀的具體原因，是蛋白濃度過(guò)高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時(shí)超濾，降低濃度的辦法解決，后者的方法是換不同的緩沖溶液，直到蛋白不發(fā)生沉淀為止。

（5）前面幾步用以濃縮蛋白，如果要換Buffer，在總蛋白液濃縮至1ml左右的時(shí)候，輕輕加入新的Buffer（經(jīng)0.22um超濾膜超濾），再濃縮至1ml左右，連續三次，最后一次的濃縮終體積根據需要的蛋白濃度而定，一般不多于500ul，也有濃縮至200ul以?xún)鹊那闆r。按照每次至少10倍左右的體積濃縮算，三次達到1000倍以上，基本上可以達到換buffer的目的。